dc.contributor.advisor | Branco, Cátia dos Santos | |
dc.contributor.author | Ferlito, Marcos Vinicius | |
dc.contributor.other | Cadoná, Francine | |
dc.contributor.other | Colombo, Rafael | |
dc.contributor.other | Machado, Alencar Kolinski | |
dc.date.accessioned | 2024-10-04T15:31:55Z | |
dc.date.available | 2024-10-04T15:31:55Z | |
dc.date.issued | 2024-10-04 | |
dc.date.submitted | 2024-07-15 | |
dc.identifier.uri | https://repositorio.ucs.br/11338/13854 | |
dc.description | A Fotobiomodulação (FBM) tem sido utilizada e estudada na área de medicina esportiva para acelerar as respostas metabólicas e estruturais no músculo esquelético gerando efeitos como aumento da microcirculação intravascular, diminuição da produção de ácido lático, aprimoramento da função mitocondrial e contrátil, melhora da capacidade antioxidante dos músculos, prevenção de danos celulares induzidos pelo exercício e recuperação pós exercício de força. Estudos sugerem que os cromóforos mitocondriais estão envolvidos diretamente no mecanismo e efeitos primários e secundários da FBM, como modulação do potencial de membrana mitocondrial (Delta Psi m) e estímulo da biossíntese de ATP. Atualmente a FBM tem sido associada ao Campo Magnético Estático (CME) na área clínica, potencializando os efeitos gerados pela FBM quando utilizada isoladamente, entretanto, até o momento, os efeitos bioquímicos e moleculares da FBM-CME em mioblastos são desconhecidos. O presente trabalho teve como objetivo investigar os efeitos da fotobiomodulação associada ao campo magnético estático (FBM-CME), em diferentes doses em células musculares C2C12 na presença ou ausência de peróxido de hidrogênio (H2O2). Foram avaliados os efeitos agudos da irradiação na viabilidade celular, liberação de DNA de fita dupla (dsDNA), produção de óxido nítrico (ON) e de Espécies Reativas de Oxigênio (ERO), Delta Psi m, atividade do Complexo IV da cadeia de Transporte de Elétrons e morte celular (Apoptose e Necrose) por meio de ensaios espectrofotométricos, fluorimétricos e por citometria de fluxo. Foram testados os efeitos da FBM-CME antes (pré-), após (pós-) ou em simultâneo (co-exposição) ao H2O2. Os resultados demonstraram que a melhor eficácia da irradiação frente ao H2O2 nos parâmetros de viabilidade celular, níveis de ON, dsDNA e ERO foi observada no co-tratamento. Sendo assim essa condição foi a escolhida para os ensaios de modulação mitocondrial. Observou-se que a FBM-CME modulou de forma positiva o Delta Psi m e o complexo IV em condições normais e restaurou a níveis normais quando comparado a células expostas ao H2O2. A análise de citometria também evidenciou que a dose de 3J manteve o número de células viáveis comparáveis ao controle (>60%; p>0.05), enquanto células irradiadas com 20 J e/ou com H2O2 aumentaram significativamente o número de células apoptóticas (3,5 vezes e 2,6 vezes, respectivamente; p<0.05) em relação ao controle de células. No co-tratamento com a dose de 3J e H2O2 houve recuperação de 25% no número de células viáveis comparado ao H2O2 sozinho (p=0.01). Pode-se inferir, portanto, que a FBM-CME em um ambiente normal e oxidativo, utilizando 3J de energia, pode modular positivamente as células mioblásticas. Todavia, quando expostas a doses mais elevadas, mesmo em um ambiente não oxidativo, pode causar e/ou potencializar o estresse oxidativo pelo aumento da atividade mitocondrial, demonstrando um perfil de resposta dose-dependente. [resumo fornecido pelo autor] | pt_BR |
dc.description.abstract | Photobiomodulation (PBM) has been utilized and investigated in the field of sports medicine to expedite metabolic and structural responses in skeletal muscle, yielding effects such as increased intravascular microcirculation, decreased lactic acid production, enhancement of mitochondrial and contractile function, improvement in muscle antioxidant capacity, prevention of exercise induced cellular damage, and post-exercise strength recovery. Studies suggest that mitochondrial chromophores are directly involved in the primary and secondary mechanisms and effects of photobiomodulation, such as modulation of mitochondrial membrane potential (Delta Psi m) and stimulation of ATP biosynthesis. Currently, PBM has been associated with Static Magnetic Field (SMF) in clinical settings, potentiating the effects generated by photobiomodulation when used in isolation. However, the biochemical and molecular effects of PBM-SMF on myoblasts remain unknown. This study aimed to investigate the effects of photobiomodulation associated with static magnetic field (PBM-SMF) at different doses on C2C12 muscle cells in the presence or absence of hydrogen peroxide (H2O2), employed as a positive control. The acute effects of irradiation on cell viability, double-stranded DNA (dsDNA) release, nitric oxide (NO) and Reactive Oxygen Species (ROS) release, Delta Psi m, Complex IV activity of the Electron Transport Chain, and cell death (Apoptosis and Necrosis) were evaluated through spectrophotometric assays, fluorimetric and flow cytometry. The effects of PBM-SMF were tested before (pre-), after (post-), or simultaneously (co-exposure) with H2O2. Results demonstrated that the optimal efficacy of irradiation against peroxide in terms of cell viability, NO levels, dsDNA, and ROS was observed in co-treatment. Therefore, this condition was chosen for mitochondrial modulation assays. It was observed that PBM-SMF positively modulated Delta Psi m and complex IV under normal conditions and restored to normal levels when compared to cells exposed to H2O2. Flow cytometry analysis also revealed that the dose of 3J maintained the number of viable cells comparable to control (>60%; p>0.05), while cells irradiated with 20 J and/or with H2O2 significantly increased the number of apoptotic cells (3.5 times and 2.6 times, respectively; p <0.05) compared to control cells. In co-treatment with the 3J dose and H2O2, there was a 25% recovery in the number of viable cells compared to H2O2 alone (p=0.01). Therefore, it can be inferred that PBM-SMF in a normal and oxidative environment, using 3J of energy, can positively modulate myoblastic cells. However, when exposed to higher doses, even in a non-oxidative environment, it may cause and/or potentiate oxidative stress through increased mitochondrial activity, demonstrating a dose-dependent response profile. [resumo fornecido pelo autor] | en |
dc.description.sponsorship | Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES | pt_BR |
dc.language.iso | en | pt_BR |
dc.language.iso | pt | pt_BR |
dc.subject | Fototerapia | pt_BR |
dc.subject | Terapia com luz de baixa itensidade | pt_BR |
dc.subject | Campo magnéticos | pt_BR |
dc.subject | Mioblastos | pt_BR |
dc.subject | Cultura de células | pt_BR |
dc.subject | Phototherapy | en |
dc.subject | Low-level light therapy | en |
dc.subject | Magnetic fields | en |
dc.subject | Myoblasts | en |
dc.subject | Cell culture | en |
dc.title | Efeito agudo da fotobiomodulação associada ao campo magnéticoestático em células musculares C2C12 expostas ao peróxido de hidrogênio | pt_BR |
dc.type | Dissertação | pt_BR |
mtd2-br.advisor.instituation | Universidade de Caxias do Sul | pt_BR |
mtd2-br.advisor.lattes | http://lattes.cnpq.br/2070361780557584 | pt_BR |
mtd2-br.author.lattes | FERLITO, M. V. | pt_BR |
mtd2-br.program.name | Mestrado Acadêmico em Biotecnologia | pt_BR |
mtd2-br.contributor.coorientador | Marchi, Thiago de | |
mtd2-br.campus | Campus Universitário de Caxias do Sul | pt_BR |
local.data.embargo | 2026-10-02 | |